提取速度快 适合自动化提取

用于检测或样本较多情况下的检测，操作复杂如果导致交叉污染会引起误诊，还会影响出检测报告的时间。因而，选用操作简便、流畅的血浆病原DNA提取试剂盒非常重要。
一般来说，血清血浆的量与提取的核酸量成正比。因而，如果要提高核酸得率，可通过增加血清或血浆的量来实现。一般地，做血浆或血清核酸提取，样本量在1ml以上。如果1ml或更大量样本得不到满意的检测结果，则应及时考虑更换提取试剂盒。血浆病原DNA提取试剂盒的核酸提取得率较高，1ml病人血浆样本DNA得率在85ng左右，Q的得率在72ng左右，T的得率在63ng左右，基本上都能满足下游PCR实验的需求。其检测下限为2ng/ul。如洗脱液为30ul，则需要1ml左右的血浆才能检测出来。显然，如果是健康人的血浆，1ml血浆的DNA浓度更低。因而，血浆DNA提取完成以后，应该直接做PCR。

选择血浆病原DNA提取试剂盒也取决于你需要多少DNA?
大多数DNA分离试剂盒公司都提供含有类似成分的试剂盒，这种试剂盒可以根据处理样品的体积进行缩放。对于特别的应用，当涉及到培养物或组织样本的数量时，选择可能较少。
小量制备：>15 mL
中量提取：15-25 mL
大规模制备：100-200 mL
巨型制备：500-2,500 mL
甚**达2.5-5升。

在选择DNA提取试剂盒时，较重要的变量可能是你所使用的生物体。
1、许多试剂盒都有用于DNA分离的不同成分，这些试剂盒之间的主要区别在于细胞是如何被分解的，因为有些比其他更更有挑战性。例如，形成生物膜的可能比传统的基于去垢剂的方法需要更强的裂解技术。
2、动物组织：用于动物组织DNA分离的试剂盒通常具有更温和的裂解技术，因为大多数动物细胞不像细胞那样有细胞壁。然而，动物组织DNA提取的挑战往往在于选择合适的组织匀浆方法。此外，许多动物DNA纯化试剂盒不使用/氯仿萃取或乙醇作为沉淀步骤，以减少破坏DNA的风险。
3、植物：当涉及到植物DNA分离时，必须考虑到其他一些因素，需要注意污染物的去除。植物在纯化过程中通常含有未分离的糖，因此，洗涤剂选择性地与DNA结合并从溶液中析出，通常是先将洗涤剂溶解在高浓度的盐溶液中，然后提取DNA。
4、血液：由于技术上的许多新进展，血液DNA分离试剂盒中有多种裂解技术和提取方法可供选择。从血液中分离出的DNA将在很大程度上决定你使用的裂解和提取的类型。无论应用是什么，一定要选择一种能够提供纯净、完整、双链和浓缩DNA的试剂盒，以获得较好地效果。

血液游离DNA（又称血液循环DNA）是指血液中游离于细胞外的DNA，其来源主要有三：白细胞崩解释放的DNA、坏死组织特别是肿 瘤组织释放入血液的DNA和感染病毒等的DNA。近几年来，随着基因诊断技术的发展，游离核酸的应用价值越来越大，如优生筛查、早期诊断、遗传病检测和病原体感染基因检测等。但血液中游离DNA含量一般较低，片段较小，不易提取，这大大影响了游离核酸的基因检测和各种研究的开展。

血浆病原DNA提取试剂盒的操作步骤：
1、取出洗涤液，按以下操作：
洗涤液A：21mL加入9mL无水乙醇；42mL加入18mL无水乙醇，混匀。
洗涤液B：9mL加入21mL无水乙醇；18mL加入42mL无水乙醇，混匀。
配制好的洗涤液如出现沉淀，可在37℃溶解，摇匀后使用。
2、取1.5mL离心管，加入200μL血液样本，再加入200μL 裂解液及40μL 消化液，振荡混匀，65℃水浴10 分钟。
3、加入150μL异丙醇（总体积的25%），混合均匀，如有半透明悬浮物，不影响DNA的提取与后续实验。
4、将吸附柱放入收集管内，将上述溶液转入吸附柱内，12,000 rpm 离心1 分钟，弃收集管内废液；
5、将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液A至吸附柱内，12,000 rpm 离心1 分钟，弃收集管内废液。
6、将吸附柱放回收集管内，加500μL 洗涤液B至吸附柱内，12,000 rpm 离心1 分钟，弃收集管内废液。
7、按每份样本40μL 取洗脱液，放置于灭菌1.5mL离心管，65℃预热。
8、将吸附柱放回收集管内，12,000 rpm 离心2 分钟，离去残留的洗涤液。
9、取出吸附柱，放入新的1.5 mL 灭菌离心管内，在吸附柱中心加入40 μL 预热洗脱液，静置2分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集DNA溶液。提取的DNA即可用于下一步实验或-20℃保存。

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